OOO «PO Sibbiofarm»
Currently, a huge number of feed additives are used in the production of poultry meat, aimed at improving production performance. Each poultry farm selects feed additives based on its own requests, in which the economic aspect also plays an important role. In the article, using the example of a Kuzbass poultry farm, one production experience of using feed additives, the action of which is aimed at correcting the intestinal microbiome, in order to change pathological conditions, is analyzed.
poultry farming, broiler chickens, feed additives, feeding, correctors, microbiome
Антибиотических препаратов, направленных на борьбу с бактериальными инфекциями птиц множество. В последнее время ученые и специалисты птицефабрик все больше отмечают снижение эффективности применения антибиотиков. При длительном применении антибактериальных препаратов возникает устойчивость микроорганизмов, что негативно сказывается на производственных показателях [1, 2].
Из-за интенсивности ведения птицеводства возникают благоприятные условия для накопления условно-патогенной микрофлоры, в связи с этим стали быстрее распространяться инфекционные болезни, такие, как колибактериоз. На кишечную палочку (Escherichia coli) приходится около 41,2% состава микрофлоры, выделенной в последнее время от разных видов сельскохозяйственной птицы [3].
Постоянное применение на практике большого количества антибиотиков привело к возникновению устойчивых бактерий, которые являются возбудителями наиболее значимых заболеваний [4].
В выводах ученых, о представлении микробиоты желудочно-кишечного тракта птиц, прослеживается четкая связь между его структурой и продуктивностью птицы в конечном итоге. Так же установлено, что состав микробиома непосредственно влияет на иммунитет птицы и способность организма наиболее эффективно усваивать питательные вещества [5].
Цель исследования – определить влияние скармливания препаратов с антибактериальной активностью при их применении в челночных схемах на состав микробиоты слепых отростков цыплят-бройлеров.
Исследование проводили на одной из птицефабрик Кемеровской области – Кузбасса на цыплятах-бройлерах кросса Росс – 308 в условиях напольной системы содержания птицы. По методу аналогичных групп были подобраны 6 групп молодняка в суточном возрасте, с учетом живой массы: две контрольные группы, четыре опытные группы. Количество бройлеров в каждой группе составило 100 голов. При формировании групп учтены положения методики ФНЦ «ВНИТИП» РАН [6, 7].
Цыплятам 1-й контрольной группы скармливали полнорационный комбикорм (ПК) по фазам выращивания «старт», «рост», «финиш 1» с применяемым на предприятии кормовым антибиотиком Эндуро премикс. Цыплятам-бройлерам 2-й контрольной группы скармливали ПК без кормовых антибиотиков. В 1-й опытной группе в комбикорме на фазах «старт», «рост», «финиш 1» и «финиш 2» заменяли используемый на предприятии кормовой антибиотик на препараты Сиберсил (пробиотик) и Глюколюкс F 1000 (фермент). Во 2-й опытной группе в комбикорме на фазах «старт» и «рост» заменяли используемый на предприятии кормовой антибиотик на антибактериальные препараты Бацилихин 120 (кормовой антибиотик) и Глюколюкс F 1000 (фермент), на «финиш 1» вводили препараты Флавомицин 80 (кормовой антибиотик) и Глюколюкс F 1000 (фермент), на «финиш 2» – не применяли кормовые антибиотики, но дополнительно вводили ферментный препарат Глюколюкс F. В 3-й опытной группе на фазах «старт», «рост», «финиш 1», «финиш 2» использовали только ферментный препарат Глюколюкс F 1000. В 4-й опытной группе в комбикорме на фазах «старт» и «рост» заменяли используемый в 1-й контрольной группе кормовой антибиотик на Бацилихин 120 (кормовой антибиотик) и Глюколюкс F 1000 (фермент), на «финиш 1» и «финиш 2» вводили препараты Сиберсил (пробиотик) и Глюколюкс F 1000 (фермент) (табл. 1).
Рационы для цыплят-бройлеров контрольных и опытных групп по питательности были аналогичными и соответствовали рекомендациям для кросса Росс 308. Общая продолжительность исследований составила 42 дня.
Таблица 1 – Схема исследований на цыплятах-бройлерах
|
Группа |
Кол-во птицы, голов |
Схема кормления |
|
1-я контрольная |
100 |
Полнорационный комбикорм (ПК) с применением на фазах «старт», «рост», «финиш 1» Эндуро премикс в дозе 150 г/т |
|
2-я контрольная |
100 |
ПК без применения комового антибиотика на всех фазах. |
|
1-я опытная |
100 |
ПК с применением на фазах «старт», «рост» препаратов Сиберсил в дозе 150 г/т + Глюколюкс F 1000 в дозе 500 г/т; на фазах «финиш 1», «финиш 2» препаратов Сиберсил в дозе 150 г/т + Глюколюкс F 1000 в дозе 500 г/т |
|
2-я опытная |
100 |
ПК с применением на фазах «старт», «рост» препаратов Бацилихин 120 в дозе 415 г/т + Глюколюкс F 1000 в дозе 500 г/т; на фазе «финиш 1» препаратов Флавомицин 80 в дозе 60 г/т + Глюколюкс F 1000 в дозе 500 г/т; на фазе «финиш 2» препарата Глюколюкс F 1000 в дозе 500 г/т |
|
3-я опытная |
100 |
ПК с применением на фазах «старт», «рост», «финиш 1», «финиш 2» препарата Глюколюкс F 1000 в дозе 500 г/т |
|
4 опытная |
100 |
ПК с применением на фазах «старт», «рост» препаратов Бацилихин 120 в дозе 415 г/т + Глюколюкс F 1000 в дозе 500 г/т; на фазах «финиш 1», «финиш 2» препаратов Сиберсил в дозе 150 г/т + Глюколюкс F 1000 в дозе 500 г/т |
Состав микробиоты слепых отростков кишечника цыплят-бройлеров устанавливали в 35-дневном возрасте в научно-исследовательской лаборатории «Биохимических, молекулярно-генетических исследований и селекции сельскохозяйственных животных» Кузбасского ГАУ в соответствии с Методическими рекомендациями «Выделение и идентификация бактерий желудочно-кишечного тракта животных» от 11.05.2004 г. № 13-5-02/1043 [8].
Результаты исследований представлены в таблице 1.
В результате анализа полученных данных установлено, что в 1-й и 2-й контрольных группах коли-индекс одинаковый и составил 100000000. В опытных группах самое низкое значение коли-индекса отмечено в 4-й опытной группе – 100. В 1-й и 3-й опытных группах коли-индекс имеет одинаковое значение – 1000.
В слепых отростках цыплят-бройлеров 2-й контрольной группы, которым не скармливали кормовые антибиотики, обнаружены бактерии нормофлоры кишечника, такие как Bifidobacterium spp. (6,8×109), Lactobacillus spp. (3×109), тогда как у цыплят 1-й контрольной группы в слепых отростках обнаружена только условно-патогенная микрофлора в виде Escherihia coli (3,2×108).
Таблица 1– Состав микробиоты слепых отростков цыплят бройлеров
|
Показатель |
Группа |
|||||
|
1-я конт-рольная |
2-я конт-рольная |
1-я опытная |
2-я опытная |
3-я опытная |
4-я опытная |
|
|
Escherichia coli |
3,2×108 |
2×108 |
5×103 |
- |
2,6×103 |
8×102 |
|
Bacillus pumilus |
- |
- |
2×108 |
- |
- |
- |
|
Staphylococcus aureus |
- |
- |
- |
5 ×107 |
- |
- |
|
Staphylococcus equorum |
- |
- |
- |
2,8 ×109 |
- |
- |
|
Bifidobacterium spp. |
- |
6,8×109 |
2×108 |
5 ×109 |
1×109 |
6×108 |
|
Lactobacillus spp. |
- |
3×109 |
- |
1,2×109 |
- |
- |
|
Коли-индекс |
100000000 |
100000000 |
1000 |
10000000 |
1000 |
100 |
Меньше всего условно-патогенной и патогенной микрофлоры обнаружено в слепых отростках цыплят 4-й опытной группы – только Escherichia coli – 8×102. Наиболее высокое содержание представителей нормофлоры кишечника цыплят отмечено во 2-й опытной группе – Bifidobacterium spp. – 5×109, Lactobacillus spp. – 1,2×109.
Следовательно, применение челночной схемы антимикробных препаратов Бацилихин 120 в дозе 415 г/т и Глюколюкс F 1000 в дозе 500 г/т на фазах «старт», «рост», Сиберсил в дозе 150 г/т и Глюколюкс F 1000 в дозе 500 г/т на фазах «финиш 1», «финиш 2» приводит к уменьшению содержания патогенных и условно-патогенных микроорганизмов, увеличению содержания бифидобактерий в слепых отростках кишечника цыплят-бройлеров, что положительно отражается на продуктивных качествах и сохранности птицы.
1. Infekcionnye bolezni zhivotnyh / B. F. Bessarabov, L. L. Vatutin, E. S. Voronin [i dr.]; pod red. L. L. Sidorchuka. – Moskva: Kolos, 2007. – 671 s.
2. Monitoring vozbuditeley bakteriynyh infekciy / B. Gusev, E. Svetoch, N. Glazkov [i dr.] // Pticevodstvo. – 2003. – № 2. – S. 8–12.
3. Sovremennye principy antibiotikoterapii v pticevodstve / S. V. Schepetkina, O. B. Novikova, A. V. Zabrovskaya, V. P. Terleckiy, V. I. Tyschenko – SPb, 2015. – 12 s.
4. Vinohodov, V. O. Biotehnologiya profilaktiki kolibakterioza ptic. – 2000. – 471 s.
5. Chem zamenit' antibiotiki v pticevodstve? / E. A. Yyldyrym, L. A. Il'ina, D. G. Tyurina [i dr.] // Pticevodstvo. – 2020. – № 9. – S. 41–46.
6. Metodika provedeniya nauchnyh i proizvodstvennyh issledovaniy po kormleniyu sel'skohozyaystvennoy pticy. Molekulyarno-geneticheskie metody opredeleniya mikroflory kishechnika / pod obschey red. V. I. Fisinina. – Sergiev Posad: VNITIP, 2013. – 52 s.
7. Metodika provedeniya issledovaniy po tehnologii proizvodstva yaic i myasa pticy / pod obschey red. V. S. Lukashenko, A. Sh. Kavtarashvili. – Sergiev Posad: VNITIP, 2015. – 104 s.
8. Metodicheskie rekomendacii «Vydelenie i identifikaciya bakteriy zheludochno-kishechnogo trakta zhivotnyh» ot 11.05.2004 g. № 13-5-02/1043.
